樣品準備

組織樣品：

將組織剪成細小的碎片，按每20mg組織加入150-250μl裂解液的比例加入裂解液（裂解液中加入蛋白酶和磷酸酶抑制劑），勻漿器勻漿直至完全裂解。裂解后的樣品4℃ 12000g 離心15分鐘，取上清，進行蛋白質定量后貯存于-80℃冰箱。

1.蛋白定量；

2. 根據樣品數量，將BCA試劑A與試劑B按體積比為50:1配制適量BCA工作液，充分混勻；

3. 各孔加入160μl BCA工作液；

4. 把酶標板放在振蕩器上振蕩30sec，37℃放置30分鐘，然后在562nm下測定吸光度。以吸光值為橫坐標，蛋白濃度（μg/μl）為縱坐標，繪出標準曲線；

5. 在酶標板中加入2μl待測蛋白和18μl PBS（稀釋10倍），加入160μl BCA工作液，把酶標板放在振蕩器上振蕩30sec，37℃放置30分鐘，然后在562nm下測定吸光度。

6. 根據所測樣品的吸光值，在標準曲線上即可查得相應的蛋白濃度（μg/μl），乘以樣品稀釋倍數（10）即為樣品實際濃度（單位：μg /μl）。

PAGE膠的制備

1. 下層分離膠的制備

    根據目的蛋白的分子量選擇不同的凝膠濃度，高分子量蛋白用低濃度膠，低分子量蛋白用高濃度膠分離。   P62 60kDa   LC3B 14，16kDa  GAPDH  37kDa   故選用  10%  和15%  的膠。   不同濃度的分離膠按下表進行配制，待下層膠凝固后進行上次濃縮膠的配制。

2. 上層濃縮膠的配制

根據需要按下表配制濃縮膠，并插好梳子。

上樣及電泳

1. 上樣

每孔上樣量約為       15    μl蛋白，可以根據實驗要求加大上樣量。根據蛋白定量結果取所需蛋白加入適量上樣緩沖液，沸水浴10min后離心取上清上樣。將配制好的PAGE膠放入電泳槽中，加入適量電泳緩沖液，取下梳子用槍輕輕吹打加樣孔，避免孔內有余膠殘留影響上樣。將準備好的樣品用加樣槍慢慢加到對應的孔內，注意勿溢出加樣孔。

2. 電泳

一般濃縮膠80V 20分鐘，分離膠120V 60分鐘，可以根據具體實驗要求調整電壓和時間。當染料到達膠底部時切斷電源，停止電泳，進行下一步轉膜。

轉膜

轉膜分為濕轉和半干轉，本實驗室選用半干轉。    

半干式轉膜中，三明治的排列為：/慮紙/膠/膜/慮紙，用電轉緩沖液浸濕后，直接置于電轉儀的正負極之間。膠于負極而膜置于正極。半干式的電轉緩沖液不同于濕式的電轉緩沖液，推薦為：48 mM Tris, 39 mM glycine, 0.04% SDS, 20%甲醇。25V轉膜30分鐘即可。轉膜前將PVDF膜在甲醇中浸泡1-2 分鐘（NC膜在電轉液中浸泡10-20分鐘），再孵育于冰冷的電轉緩沖液中5 分鐘，膠也需在冰冷的電轉緩沖液中平衡3-5 分鐘，否則轉膜時會導致條帶變形。

膜上蛋白的檢測

    為檢測轉膜是否成功，可用麗春紅染色，麗春紅染色工作液：2%的麗春紅貯備液1：10 稀釋，即加9 倍的ddH2O

染色方法：將膜放入TBST 洗一次，再置于麗春紅染色工作液中,在室溫下搖動染色5 分鐘，大量的水洗膜直至水變清無色蛋白條帶清晰，（膜也可以用TBST 或水重新洗后再進行染色）PVDF 膜需用甲醇再活化后用TBST洗后進行封閉。

膜的封閉及抗體孵育

1. 封閉：5%脫脂奶粉（檢測磷酸化蛋白用BSA）室溫封閉1小時或4℃過夜。

2. 一抗：根據說明書   P62 1：1000  LC3B 1：1000    GAPDH 1：2000  稀釋抗體，抗體加入封閉液中稀釋到所需濃度，和膜室溫孵育2小時或4 ℃孵育過夜。

3. 二抗：孵育一抗的膜用TBST洗滌3次，每次5min。隨后根據用量，按照1:1000稀釋HRP標記的二抗，與膜37℃孵育1h。用TBST洗滌3次，每次5min。

顯色

ECL化學發光檢測：配制ECL發光液，根據用量，取ECL發光液A和B等量混勻，加在膜的正面暗室避光5分鐘。倒掉顯色液，用紙小心吸取顯色液，在上面蓋上一層平整的透明紙。將其放入成像系統中進行掃描。可以根據條帶強弱再次感光或減短感光時間已達到理想結果。